PUREfrex® 试剂盒是在东京大学的Takuya Ueda教授所发明的PUREsystem技术基础上，新开发的一款重组合无细胞蛋白合成试剂盒。
该反应系统由蛋白、核糖体、氨基酸和、NTPs组成。进行蛋白表达仅需将编码目标蛋白的模板DNA或mRNA加入到反应体系中，然后孵育2-4小时即可完成反应，且无需担心高背景影响到下游应用。
本试剂盒是各组分经过纯化再重新组合而成，而非直接从大肠杆菌中提取，RNase、β-半乳糖苷酶以及脂多糖（LPS）污染已受到严格控制。PUREfrex® 试剂盒中的所有蛋白组分都不带标签，因此目的蛋白可融合任意标签进行纯化和检测。
● 可以同时加入多种模板进行反应，以合成Fab（带二硫键）及多聚体等带二级结构的多肽
● 单位体积内合成的蛋白量几乎恒定，不随反应体积变化而产生显著差异
以下为PUREfrex® 已经过实验验证的应用功能，如需进一步数据，请联系在线客服索取技术资料。
已知若改变合成蛋白的起始密码子后的2-6号氨基酸密码子，合成蛋白的量会有很大的差异。这是以曲妥珠单抗（商品名赫赛汀）的Fab重链（VH+CH1）为模型，制备56种不同的密码子模板，比较其合成量。
在带His tag的Nanodisc上合成膜蛋白，进行亲和纯化的步骤时，即可从反应产物中纯化膜蛋白。
α-Synuclein的N端带有His tag时合成蛋白，根据His tag序列的不同，有时合成量会降低。合成量的降低，只需更改His tag的基因序列就可以改善。
用PUREfrex® 1.0 和PUREfrex® 2.0 试剂盒中含有的DHFR制备带有His tag的模板DNA作为对照，并展示了用Ni亲和柱纯化后的结果。
Fab是轻链（LC）和重链（HC）在分子内形成二硫键并缔合变活性型。向PUREfrex® 2.0 反应液中添加DS supplement合成Fab抗体后的结果显示，合成了可以和抗原结合的活性Fab抗体。另外，通过最优化轻链（LC）和重链（HC）的模板DNA的添加比例，活性型Fab抗体的回收量也上涨了。
轻链（LC）和重链（HC）形成的Fab中，为了提高重链（HC）的合成量，通过向碱基序列中导入沉默突变，并改变5’端处的9个氨基酸的GC含量，调查其对合成量的结果显示，AT含量越高，合成量就有可能越高。
用PUREfrex® 1.0 和PUREfrex® 2.0 分别合成相同的蛋白，比较其合成量以及活性。
通过向PUREfrex®（#PF001）的反应体系中添加DNA（或mRNA）并进行反应，不仅可以合成原核生物来源的蛋白，也可以合成真核生物来源的蛋白。例如，合成大肠杆菌的DHFR时，一个试剂盒（500 μL）可以合成50 μg以上的DHFR。下图的电泳是反应产物。
● GFP : Green fluorescent protein *
● DHFR : Dihydrofolate reductase
● GST : Glutathione S-transferase
● β-Gal : β-Galactosidase
● CS : Citrate synthase *
● MDH : Malate dehydrogenase *
● Her2d1 : Domain1 of Her2 *
使用添加了GroE Mix的PUREfrex® 1.0，合成4类大肠杆菌蛋白（FadA、HemB、PepQ、PyrC）*1)，检测合成产物的可溶性。
*1）FadA, HemB, PepQ, PyrC是大肠杆菌内作为GroE的底物被报道的蛋白
(Ref; Fujiwara et al. (2010) EMBO J, 29, 1552-1564)
使用添加了DnaK Mix的PUREfrex® 合成荧光素酶，检测合成产物的活性。
合成有SS键的蛋白
在不同浓度的大肠杆菌DsbC存在下合成含有复数的二硫键蛋白，vtPA（truncated version of tissue plasminogen activator）和AppA（大肠杆菌酸性磷酸酶），并比较它们的活性。
● PUREfrex® 已升级到2.0，比第一代产品表达量更高，污染物水平更低
● PUREfrex® 2.1 比2.0更适合二硫键的形成
